Materiāli un metodes

Materiāli
Izmantotie reaktīvi
Izmantotie šķīdumi
Izamntotā aparatūra
Metodes
Genomiskās DNS izdalīšana
Praimeru šķīdumu pagatavošana
PCR PRKCB1 gēna 18. eksona amplifikācijai
PCR produktu pārbaude ar agarozes elektroforēzi
PCR produktu SSCP analīze
DNS PAAG krāsošana ar sudrabu


Materiāli

Izmantotie reaktīvi 

“Genomic DNA Purification Kit #K0512” – “Fermentas” (Lietuva)

“Taq DNA Polymerase (reombinant) #EP0402” – “Fermentas”(Lietuva)

“dNTP 10 mM Solution” – “Fermentas”(Lietuva)

Praimeri – sintezēti LU BMC (Latvija)

Kreisās puses praimeris – 5’ – CTCTTTCTGACTCTGCTCA – 3’ (19 nt)

Labās puses praimeris – 5’ – GGAGTTTGCATTCACCTA – 3’ (18 nt)

DNS garuma standarts “pUC19 DNA/MspI (HpaII) Marker #SM0221” – “Fermentas” (Lietuva)

SDS – “Sigma”(ASV)

Proteināze K – “Boehringer Mannheim”(Vācija)

EDTA – “Serva” (ASV)

Tris bāze – “Reanal” (Ungārija)

Etanols 960 – “Enola” (Latvija)

Agaroze – “Aire”(Igaunija)

Etīdija bromīds – “Fluka” (Šveice)

HCl – “Reahim” (Krievija)

Etiķskābe (ledus) – “Reahim” (Krievija)

Borskābe – “Reahim” (Krievija)

HNO3 65%– “Reahim” (Krievija)

AgNO3 – “Reahim” (Krievija)

NaOH – “Reahim” (Krievija)

Na2CO3 – “Reahim” (Krievija)

NaCl – “Reahim” (Krievija)

Formamīds – “Merck” (Vācija)

Formalīns 37% – “Reahim” (Krievija)

Fenols – “Reahim” (Krievija)

Hloroforms – “Reahim” (Krievija)

Izoamilspirts – “Reahim” (Krievija)

Glicerīns – “Reahim” (Krievija)

Akrilamīds – “Biorad” (ASV)

Bis-akrilamīds – “Biorad” (ASV)

TEMED – “Biorad” (ASV)

APS – “Biorad” (ASV)

Repel silāns – “Pharmacia” (Zviedrija)

Bind silāns – “Pharmacia” (Zviedrija)

Bromfenolzilais – “Sigma”(ASV)

Ksilēna cianols – “Sigma”(ASV)
Uz sākumu

Izmantotie šķīdumi

0,5 M EDTA – 186 g EDTA šķīdina 800 ml H2O; titrē ar 10 M NaOH līdz pH 8; uzpilda ar H2O līdz 1000 ml.

2 M Tris-Cl pH 7,5 – 242 g Tris bāzes izšķīdina 700 ml H2O; titrē ar HCl līdz pH 7,5; uzpilda ar H2O līdz 1000 ml.

2 M Tris-Cl pH 8 – 242 g Tris bāzes izšķīdina 700 ml H2O; titrē ar HCl līdz pH 8; uzpilda ar H2O līdz 1000 ml.

5 M NaCl:

NaCl 29,23 g

H2O uzpilda līdz 100 ml

TE buferis: 10 mM Tris-Cl pH 7,5; 1 mM EDTA

2 M Tris-Cl pH 7,5 5 ml

0,5 M EDTA 2 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

PKLB: 10 mM Tris-Cl pH 8,0; 25 mM EDTA; 200 mM NaCl

2 M Tris-Cl pH 8,0 5 ml

0,5 M EDTA 50 ml

5 M NaCl 40 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

50x TAE buferis: 2 M Tris-acetāts; 50 mM EDTA

Tris bāze 242 g

Etiķskābe (ledus) 57,1 ml

0,5 M EDTA 100 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

0,5x TAE buferis:

50x TAE buferis 10 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

10x TBE buferis: 0,9 M Tris-borāts; 20 mM EDTA

Tris bāze 108 g

Borskābe 55 g

0,5 M EDTA 100 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

1x TBE buferis:

10x TBE buferis 100 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

0,5x TBE buferis:

10x TBE buferis 50 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

10000x etīdija bromīda šķīdums:

Etīdija bromīds 50 mg

H2O 10 ml

1x etīdija bromīda šķīdums:

10000x etīdija bromīds 0,1 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

Ph:Chl:IA: attiecība 25:24:1

Fenols 50 ml

Hloroforms 48 ml

Izoamilspirts 2 ml

GLB:

Bromfenolzilais 10 mg

0,5 M EDTA 0,2 ml

Glicerīns 4 ml

H2O uzpilda līdz 10 ml

Den. GLB:

Bromfenolzilais 10 mg

Ksilēna cianols 10 mg

0,5 M EDTA 0,2 ml

Formamīds uzpilda līdz 10 ml

Gelu žāvēšanas šķīdums:

Etanols 960 22,5 ml

Glicerīns 7,5 ml

H2O 120 ml

10% SDS:

SDS 10 g

H2O 90 ml

10% APS:

APS 0,5 g

H2O 4,5 ml

40% akrilamīds

Akrilamīds 40 g

H2O 60 ml

2% Bis-akrilamīds

Bis-akrilamīds 2 g

H2O 98 ml

Etanols 700:

Etanols 960 730 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

10% etanols:

Etanols 960 105 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

10% etiķskābe

Etiķskābe (ledus) 100ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

1% HNO3:

65% HNO3 10 ml

H2O uzpilda līdz 1000 ml

24 mM AgNO3:

AgNO3 820 mg

H2O uzpilda līdz 200 ml

Attīstītājs a (280 mM Na2CO3; 0.044% formalīns):

Na2CO3 x 10 H2O 80 g

Formalīns 1,2 ml

Dejonizēts H2 O uzpilda līdz 1000 ml

Attīstītājs b (70 mM Na2CO3; 0,044% formalīns):

Na2CO3 x 10 H2O 20 g

Formalīns 1,2 ml

Dejonizēts H2 O uzpilda līdz 1000 ml

Attīstītājs c (200 mM NaOH; 0,055% formalīns):

10 M NaOH 20 ml

Formalīns 1,5 ml

Dejonizēts H2 O uzpilda līdz 1000 ml

Attīstītājs d:

Pirmais šķīdums (375 mM NaOH; 0,01% formalīns):

10 M NaOH 37,5 ml

Formalīns 2,8 ml

Dejonizēts H2 O uzpilda līdz 1000 ml

Otrais šķīdums (91 mM Na2CO3):

Na2CO3 x 10 H2 O 26 g

Dejonizēts H2 O uzpilda līdz 1000 ml

Attīstītājs (lielajam gelam)

Pirmais šķīdums (200 mM NaOH; 0,055% formalīns)

NaOH 8 g

Formalīns 1,5 ml

Dejonizēts H2O uzpilda līdz 1000 ml

Otrais šķīdums (100 mM NaOH; 0,055% formalīns)

NaOH 4 g

Formalīns 1,5 ml

Dejonizēts H2O uzpilda līdz 1000 ml 
Uz sākumu

Izmantotā aparatūra

DNS amplifikators – Mastercycler personal, “Eppendorf” (Vācija)

Termobloks -PEA-3002U, ”Labotek” (Latvija)

Centrifūgas – Force 7, “Techne” (Lielbritānija)

Vorteksfūga – 4TE, “Labotek” (Latvija)

Horizontālā eletroforēzes iekārta – mini VAGOPHOR 01, “Vagos” (Igaunija)

Vertikālā elektroforēzes iekārta – SQ3 sequencer, “Hoefer” (ASV)

Barošanas bloks – 160/1.6, “Bio-Rad”, ASV; un IPE-600-0.5 (Krievija)

Elektriskie svari – 430-33, “KERN” (Vācija)

Spektrofotometrs – 100-20, “HITACHI” (Japāna)

Ūdens dejonizētājs – milli-R/Q, “Millipore” (ASV) 
Uz sākumu

Metodes

Genomiskās DNS izdalīšana

Genomiskā DNS tika izdalīta no asinīm pēc divām dažādām metodēm, kuras tika apzīmētas kā A un B.

Katrā stobriņā (EDTA Vacutainer) ir 7 ml perifēro venozo asiņu. Sākums abām metodēm ir vienāds.

A metode

  1. Stobriņus ar asinīm centrifugē pie 300 g un pēc tam nosūc plazmas slāni.
  2. Iepilda 1,5 ml stobriņā 400μl līzes bufera (MBI Fermentas, Genomiskās DNS izdalīšanas komplekts #K0512), pievieno 200 μl no kodolainajβm asins šūnām bagāta slāņa (slānis eritrocītu frakcijas virspusē).
  3. Iesaldē, - 200C 15 min
  4. 15 minūtes tur 650C šūpotājā
  5. Pievieno 600µl hloroforma un vorteksē
  6. Centrifugē 5 minūtes 5000 g.
  7. Sagatavo percipitācijas šķīdumu: 720µl ūdens un 80µl 10x precipitācijas šķīduma (MBI Fermentas, Genomiskās DNS izdalīšanas komplekts #K0512).
  8. Percipitācijas šķīdumam pievieno centrifugāta ūdens fāzi (augšējo), un maisa invertējot 1 – 2 minūtes.
  9. a) Ja nogulsnes vājas, centrifugē 5 min 5000 g, supernatantu nosūc un uz nogulsnēm uzlej 100µl 1,2M NaCl (istabas t0);

  1. Ja nogulsnes labi saskatāmas, tās pārnes jaunā stobriņā bez centrifugēšanas, un šķīdina 100µl 1,2 M NaCl (30 – 60 minūtes), vai atstāj pa nakti. (istabas t0.)

  1. Kad nogulsnes pilnībā izšķīdušas, pievieno 300µl auksta etanola, samaisa invertējot un izgulsnē DNS, turot 10 minūtes –200C; ja nogulsnes veidojas uzreiz un ir labi saskatāmas – istabas temperatūrā.
  2. a) Nogulsnes (DNS) pārnes stobriņā ar 1 ml 700C etanolu, skalo;

  1. Ja nogulsnes vājas, centrifugē 5 minūtes 5000 g, supernatantu nosūc un uzlej 1 ml 700 etanola skalošanai.

  1. DNS pārnes stobriņā ar skrūvējamu vāku un šķīdina 200µl ūdens. Atstāj vismaz uz vienu nakti 40C
  2. Ja pēc 2 – 3 stundām vai nākošajā dienā šķīdums ir stipri viskozs, pieliek vēl 200µl ūdens; vajadzības gadījumā to atkārto vairākas reizes.
  3. B metode

  4. Eritrocītiem, kas palikuši no 2. punkta pēc virsslāņa noņemšanas, uzlej TE buferi līdz tilpumam 7 ml un apmaisa, sajaucot eritrocītu slāni, sākas eritrocītu osmotiska lizēšanās.
  5. 10 minūtes centrifugē pie 300 g, supernatantu nolej.
  6. Atkārto 14. un 15. soli līdz nogulsnes vairs tikai viegli sārtas.
  7. Nogulsnēm uzlej 1ml PKLB, uzduļķo, pieliek 75µl 10% SDS, samaisa, tad 5µl proteināzi K (20 mg/ml).
  8. Ievieto 650C uz šūpotāja un atstāj pa nakti, vai uz 3 – 4 stundām.
  9. Pievieno 1 ml Ph:Chl:IA un vorteksē.
  10. Centrifugē – 10 minūtes pie 300 G.
  11. Ūdens fāzi – augšējo – nosūc un pārnes jaunā stobriņā. Jāuzmanās, lai klāt nepaņemtu citu fāzi.
  12. Jaunajam stobriņam pievieno aptuveni 45 µl (1/25 no tilpuma, kas ir stobriņā) 5 M NaCl, un 2,5 ml (2 reizes lielāku tilpumu nekā stobriņā) etanolu.
  13. Apmaisa invertējot.
  14. a) Ja nogulsnes vājas, centrifugē 5 minūtes 3000 g, supernatantu nosūc, uzlej 2 – 3 ml 700 etanola un skalo;
  15. b) Ja nogulsnes labi saskatāmas, tās pārnes stobriņā ar 1 ml 700 etanolu un skalo.

  16. DNS pārnes stobriņā ar skrūvējamu vāku un šķīdina 200 µl, atstājot pa nakti 40C.
  17. Ja pēc 2 – 3 stundām vai nākošajā dienā šķīdums ir stipri viskozs, pieliek vēl 200µl ūdens, vajadzības gadījumā to atkārto vairākkārt.

Izdalītās DNS daudzumu un tīrību nosaka spektrofotometriski, izdarot mērījumus pie l = 260 nm un l = 280 nm. Kvarca kivetē iepilda 1 ml H2O un pievieno 5 ml iegūtā DNS šķīduma, samaisa un nolasa optisko blīvumu. Aprēķinus veic pieņemot, ka šķīdumā ar ODl260 = 1 o.v. (kivetes biezums l = 1 cm), DNS koncentrācija ir 50 mg/ml. [17] 
Uz sākumu

Praimeru šķīdumu pagatavošana.

Praimeru oligonukleotīdu sekvences ir:

Kreisās puses praimeris – 5’ – CTCTTTCTGACTCTGCTCA – 3’ (19 nt)

Labās puses praimeris – 5’ – GGAGTTTGCATTCACCTA – 3’ (18 nt)

Uzsintezētie praimeru oligonukleotīdi tika saņemti ūdens šķīdumā ar nezināmu koncentrāciju. PCR maisījuma gatavošanai ērti izmantot praimeru šķīdumus ar koncentrāciju 5 – 10 pmol/ml. Lai nokaidrotu oligonukleotīdu koncentrāciju, tika izmērīts optiskais blīvums pie l = 260 nm. Ielej kvarca kivetē 1 ml H2O un 10 ml praimera šķīduma. Tālāk var aprēķināt DNS koncentrāciju mg/ml, pieņemot, ka šķīdumā ar ODl260 = 1 o.v. (kivetes biezums l = 1 cm), vienpavediena DNS koncentrācija ir 37 mg/ml. [17] Tā kā ir zināmas praimeru sekvences un katra nukleotīda molmasas [17], tad ir viegli aprēķināt praimeru oligonukleotīdu molmasas. Zinot molmasu un koncentrāciju mg/ml, var aprēķināt koncentrāciju moli/ml. Lai turpmāk būtu ērtāk veikt aprēķinus no moli/ml pāriet uz pmoli/ml. Aprēķinu rezultāti attēloti 1. tabulā.

1. tabula Praimeru koncentrācijas aprēķini

Praimeris

OD

mg (DNS) 1ml (kivetē)

mg/ml izejas šķīdumā

Molmasa (g/mol)

Koncentrācija (pmol/ml)

Kreisais

0.54

19,98

1,998

5723,8

349,07

Labais

0.33

12,21

1,221

5533,6

220,65

Aprēķina cik daudz ūdens un cik daudz praimera šķīduma nepieciešams, lai iegūtu nepieciešamo gala koncentrāciju - 5 pmol/ml. Lai būtu vieglāk strādāt, pagatavo abu praimeru maisījumu – praimeru šķīdumus ar koncentrāciju 10 pmol/ml sajauc vienādās daļās. Aprēķina cik daudz ūdens un cik daudz praimera šķīduma nepieciešams, lai pagatavotu šķīdumu ar koncentrāciju 10 pmol/ml. Abus iegūtos praimeru šķīdumus sajauc kopā vienādās daļās un iegūst praimeru maisījumu, kurā katra praimera gala koncentrācija ir 5 pmol/ml. Aprēķini attēloti 2. tabulā.

2. tabula Praimeru šķīdumu pagatavošnas aprēķini.

Praimeris

Praimera izejas šķīdums (ml)

H2O (ml)

Koncentrācija (pmoli/ ml)

Kreisais

5,7

194

10

Labais

9,1

191

10

Uz sākumu
PCR PRKCB1 gēna 18. eksona amplifikācjai

Tika amplificēts 279 bp garš fragments no PRKCB1 gēna 18. eksona. 2. attēlā attēlota gēna sekvence no gēnu bankas (19). Ar gaiši zilu krāsu iezīmēts fagments, kas tiek sintezēts, bet ar tumši zilu – praimeri. Amplificējamais fragments ietver gandrīz visu 18. eksona kodējošo daļu un vēl 3’ daļu no 17. introna. Ar atkāpēm izdalīta 18. eksona kodējošā daļa.

2. attēls PRKCb1 gēna 18. eksons. Ar dzelenu krāsu iezīmēts fragments, kas tiek sintezēts, bet ar zaļu – praimeri. Amplificējamais fragments ietver gandrīz visu 18. eksona kodējošo daļu un vēl 3’ daļu no 17. introna. Ar atkāpēm izdalīta 18. eksona kodējošā daļa.


Lai veiktu 12 polimerāzes ķēdes reakcijas, vispirms pagatavo reaģentu maisījumu (3. tabula):

3. tabula Reaģentu maisījuma sastāvs 12 PCR reakcijām

 

Koncentrācija

Tilpums (ml)

Gala koncentrācija

H2O

 

163

 

PCR buferis

10x

24

1x

MgCl2

25 mM

19,2

2 mM

Praimeru maisījums

5 pmol/ml

19,2

 

dNTP

5 mM

4,8

0,1 mM

Taq

5 U/ml

1,5

0,625 U

Paraugu skaitu, protams, var mainīt. Tādā gadījumā pārrēķina nepieciešamos tilpumus, saglabājot gala koncentrācijas. Iegūto maisījumu kārtīgi samaisa un sadala uz 12 ependorfiem, katrā pa 19 ml. Pirms sadalīšanas, maisījumu īsi nocentrifugē, lai nekādi pilieni nepaliktu pie stobriņa vāciņa vai sieniņām. Katrai PCR pievieno 1 ml DNS šķīduma (50 ng/ml) un kārtīgi samaisa. Ievieto paraudziņus PCR aparātā. Iestāda programmu kāda attēlota 4. tabulā.

4. tabula PCR programma

 

1x

35x

1x

950C

60 s

40 s

 

550C

 

40 s

 

720C

 

50 s

300 s

Kad reakcija beidzas, ependorfus izņem no aparāta un ieliek ledusskapī 40C. Parasti veic arī negatīvo kontroli – vienam no 12 PCR stpbriņiem DNS vietā pievieno 1 ml ūdens. Tas nepieciešams, lai pārliecinātos, ka nav “piesārņojuma”. Ja arī negatīvajā kontrolē tiek iegūts PCR produkts, tad tas liecina, ka kāds no reaģentiem ir piesārņots ar DNS vai reakcijas maisījuma gatavošanas laikā ienests DNS piesārņojums. 
Uz sākumu

PCR produktu pārbaude ar agarozes elektroforēzi

Lai pārliecinātos par to, ka PCR produkts ir sintezējies pietiekamā daudzumā un ka nav nespecifisku blakus zonu, lieto elektroforēzi 1,2% agarozes gelā.

Metode:

PCR produktu SSCP analīze

Stiklu sagatavošana

  1. Stiklus rūpīgi nomazgā ar šķidro mazgāšanas līdzekli “Zilgme”, lietojot sūkli.
  2. Stiklus skalo ar krāna ūdeni.
  3. Stiklus pārskalo ar destilētu ūdeni un ļauj nožūt.
  4. Stiklus pulē:

Lielā plate: Nomazgā ar 70% etanolu

2 x pulē ar 150µl Repel-silānu

2 x pulē ar 1ml 70% etanola

(Lietot cimdus!!!)

Mazā plate: Nomazgā ar 70% etanolu

1x pulē ar maisījumu:

1ml 70% etanols

33m l 10% etiķskābe

3µl Bind-silāns

5x pulē ar 1ml 70% etanola

Kad stikli pilnībā nožuvuši, starp tiem ievieto starplikas (0,4mm) un sastiprina ar klipšiem.

(Lietot cimdus!!!)

Gela maisījuma pagatavošana:

Ūdens 43,5 ml

40%AA 7,5 ml

2%Bis - AA 3 ml

Glicerīns 3 ml

10xTBE 3 ml

Iegūto šķīdumu atgaiso ar ūdens strūklas vakumsūkņa palīdzību.

Pievieno:

10% APS 320 ml

TEMED 32 ml

Samaisa un nekavējoties pilda starp stikliem, pēc tam ievieto ķemmīti.

(Lietot cimdus!!!)

PCR produktu sagatavošana

PCR produktus vajadzīgā attiecībā sajauc ar Den.GLB (Den.GLB ne mazāk par 50% no kopējā tilpuma). Attiecība atkarīga no DNS koncentrācijas paraugā, parasti 1:1 – 1:6. Pēc tam pārklāj ar minerāleļļas slāni (viens piliens uz stobriņu).

Elektroforēze

Kad gels sapolimerizējies (pēc pāris stundām vai nākamajā rītā) gelu ievieto aparātā:

Pēc forēzes:

Uz sākumu

DNS PAAG krāsošana ar sudrabu

Stiklu (ar gelu uz augšu) liek dažādos krāsošanai nepieciešamos šķīdumos. Pirms pārnešanas uz nākošo šķīdumu, iepriekšējo notecina. Nepieciešamais šķīduma daudzums ir atkarīgs no vannas formas, bet tam ir jābūt tādā daudzumā, lai tas pārklātu gela virsmu.

1. Mazgā 5-10 min 10% etanolā.

2. Reducē 3-5 min 5% HNO3.

3. 2 x skalo H2 O (2 x 2 min).

4. Tur 20 min 24 mM AgNO3. Lai taupītu reaģentu un samazinātu vides piesārņojumu, stiklu ar gelu novieto precīzi horizontāli un uz gela uzlej 150 – 200 ml AgNO3 šķīduma, nevis mērc gelu vannā ar šo šķīdumu.

5. Īsi (ne ilgāk kā 1 min) skalo H2O.

6. Attēlu attīsta līdz labai fona/zonu attiecībai lietojot divus nedaudz atšķirīgus attīstītājus. Attīstītājam jābūt svaigi pagatavotam, to gatavo laikā, kad notiek krāsošana ar AgNO3 – 5. punkts. Vispirms iemērc gelu 1. attīstītājā. Kad parādījušās pirmās zonas, iemērc 2. attīstītājā.

7. Pārtraucējs (fiksāža) 10% etiķskābe, vismaz 10 min.

8. Skalo H2 O.

9. Žāvē. 
Uz sākumu